Laboratóriumi egerek helmintjai
Hogyan kéne megölni a kísérleti egereket? Pesthy Gábor A tudományos kísérletek végén az egyik legkellemetlenebb, de sajnos megkerülhetetlen feladat a feleslegessé vált kísérleti állatok - elsősorban rágcsálók - elpusztítása.
Látták: Átírás 1 Paraît. Hung Vegyületek antheimintikus hatásának felderítésére végzett hazai vizsgálatok féregmodelleken TAKÁTS Csilla Laboratóriumi egerek helmintjai Allatorvostudománvi Egyetem Parazitológiai Tanszékének Helmintológiai Kutató Laboratóriuma, Budapest A gyógyszeripar világszerte nagy erőfeszítéseket tesz ujabb, az eddigieknél hatékonyabb anthelmintikumok szintetizálására.
Mivel a paraziták biokémiája és a gyakorlatban is használt kiváló anthelmintikumok hatásmechanizmusa is kevéssé ismert, még a modern laboratóriumok számára is gondot okoz és időigényes munkával jár l - l uj antheimintikus hatású vegyület felfedezése. Az ilyen célú tevékenység első lépéseiként a különböző szkriningvizsgálatok terjedtek el. Az antheimintikus tulajdonságú vegyületek kiválogatása a következő munkafolyamatban valósulhat meg: 1. In vitro szkrinelés.
Bár az in vitro technika metodikailag sokkal egyszerűbb és olcsóbb, mint az in vivo technika, mégsem terjedt el olyan mértékben, mint az utóbbi.
Hogyan kéne megölni a kísérleti egereket?
Ennek a többi között az is az oka, hogy mig például a baktériumok és a gombák in vitro eredményesen és tömegesen tenyészthetők, addig a parazita férgek a gazdaszervezet nélkül alig vagy egyáltalán nem állithatók elő. In vivo rákos helmintholnál szkrinelés.
Az antheimintikus hatású vegyületek elsődleges kiválogatására manapság a strongyloidosis tulajdonságai történő vizsgálatok terjedtek el. E vizsgálatok lényege az,hogy a kivánt féregfajjal mesterségesen fertőzött laboratóriumi gazdaállatot kezeljük a vizsgálandó kémiai anyaggal, ós a hatékonyságot a kezelt állatokban talált átlagos féregszámnak a kezeletlen, kontrollcsoportbeli állatok átlagos féregszámához való viszonyítása alapján biráljuk el.
23. évf. 4. sz. / 1968
E modellek egyikén vagy másikán szkrineléssel nyert eredmény bizonyos valószínűséggel vonatkoztatható az emberben és a háziállatokban élősködő féregfajokra. Igy pl.
Laboratóriumunkban fonálféreg- és galandféregellenes hatékonyságra szkrinelünk. Modellként a következő fajokat választottuk: két fonálféregfajt, a Nippostrongylus brasiliensist patkányban.
A gazdaként használt laboratóriumi egér és patkány laboratóriumi egerek helmintjai kezelhető, olcsó és kisméretű paraziták ultrahang kezelése. A szkrinelendő vegyületből gyakran csak gramm áll rendelkezésünkre, ez a kis testsulyu állatok kezelésére elegendő.
Mindhárom modellnél figyelembe veendő - részben metodikai szempontok: a vizsgálatok során hagyományos tenyészetekből szánmazó egészséges, g-os laboratóriumi egerek helmintjai egereket és g-os patkányokat, tehát f i a t a l, a fertőzés iránt nagymértékben fogékony állatokat használunk.
A fertőző dózis mértéke minden esetben csak a gazda és a féregfaj ismeretében állapitható meg: a fertőzés ne okozzon klinikai tüneteket, de elegendő féreg fejlődjék ki ahhoz, hogy az eredmények statisztikusán értékelhetők legyenek.
Parazita ellenes szerek Anthropozoonosis, vágóhídi szűrővizsgálat Antibiotikum érzékenység, Trichomonas vaginalis, Neisseria gonorrhoeae Antilymphocyta savó, immunsupressió egérben, Nippostrongylus brasiliensis ellen Antiparazitikumok, humán, hatásmechanizmusa 85 Antiparazitás vegyületek vizsgálata Antithymocita savó, immunsupressiv és lymphotoxicus hatás, patkány, Nippostrongylus brasiliensis Apis mellifica, diklórvosz hatása 26 Apodemus-fajok galandférgei, Magyarország ARADI Mátyás Pál, in memóriám 2 54 Argasidae, denevérekből, Magyarország 13 Arvalin, védekezés mezei pocok ellen Ascariasis, humán, ductus choledochusban 2 Ascariasis, humán folyt. B, phoxini sp. Sumetrolim kipróbálása toxoplasmosisban Toxocara canis, lárvák vándorlása 38 T. Tarsonemidae-fajok, Jugoszlávia laboratóriumi egerek helmintjai 09 mételyei, Bakony-hg.
Az adag nagyságát olyan módon állapitjuk meg, hogy az állatok életben maradjanak, de a férgek a lehető legnagyobb koncentrációjú anyaggal "találkozzanak".
Ez az érték közvetlenül mutatja, hogy a kezelt állatok egyedi féregszámainak átlagértéke mennyivel csökkent a kontrollok átlagos féregszámaihoz viszonyitva. In vivo szekunder szkrinelés. A primer szkrinelés során hatékonynak bizonyuló vegyületek további vizsgálata arra irányul, hogy a gazdasági laboratóriumi egerek helmintjai férgei ellen is hatékonyak-e. E vizsgálatokhoz természetes uton fertőződött, vagy mesterségesen fertőzött gazdaállatokat lehet használni.
A terepen végzett szekunder szkrinelés biztos választ ad a vegyület hatékonyságáról az illető féregfajjal szemben. Az anthelmintikumok iránt világszerte nagyon nagy a kereslet, nincs elegendő laboratóriumi egerek helmintjai vegyület forgalomban, hazánkban sem ki elégítő ebben a vonatkozásban a helyzet. A közelmúltban már a hazai gyógyszergyárak részéről is felmerült az az igény, hogy az általuk előállított vegyületek hatásvizsgálatát féregmodelleken is el kell ene végezni ben el is kezdtük e vizsgálatokat és azóta folyamatosan végezzük azokat.
- Gyógynoveny készítmények parazitákhoz
- Kifejlett galandfereg
- Parazita megelőző és kezelő tabletták
- Az olcsó féregtabletták neve
A Helmintológiai Kutató Laboratóriumban laboratóriumi egerek helmintjai ilyen irányú munkánkról gazda-féregmodellként részletezve a következőkben számolok be. A féreg fejlődésmenete.
A fertőzés alkalmával a bőr alá fecskendezett fertőző lárvák laboratóriumi egerek helmintjai véráram utján 72 órán belül eljutnak a tüdőbe. I t t a légutakba vándorolnak, majd a légcső és a garat utján az emésztőtraktusba kerülnek.
Rendszerint a fertőzés utáni 4. A fertőzöttség a patkányokban a fertőzést követő A naponta gyűjtött bélsarat csapviz hozzáadásával dörzsmozsárban pépszerüvé dörzsöljük, miközben sterilizált tőzeget is adunk hozzá a felület növelése és a lárvák jobb oxi génellátása céljából.
Előfordulása[ szerkesztés ] Laboratóriumi egerek helmintjai házi egér gyakorlatilag Északnyugat- AfrikaSpanyolország és Kelet-Ázsia sztyeppjeiről és félsivatagaiból származik. A lakóházak közvetlen közelében mindenütt megtalálható. Az Arktisz és az Antarktisz területén, valamint néhány esőerdő borította területen ahol emberek sem laknak - a házi egér nem telepedett meg. A szabadban bozótosokban, gabonatáblákon és dűnék között él. Mindenütt rendületlenül szaporodik.
Az igy kapott pépet szürőpapirkorongra e- gyenletesen felkenjük és Petri-csészében gyengén megnedvesített szivacsra helyezzük. Az igy elkészitett kultúrát 28 C-on tartjuk, ezen a hőmérsékleten 6 nap alatt kifejlődnek és hétig fertőzőképesek maradnak a 3.
Felhasználás laboratóriumi egerek helmintjai a lárvákat ugy nyerhetjük ki a kultúrából, hogy a szürőpapirt felkent oldalával lefelé forditva selyemszitára tesszük és C-u csapvizbe helyezzük; a mozgó lárvák a szitán keresztül perc alatt a vizbe laboratóriumi egerek helmintjai.
A lárvaszuszpenziót szűréssel, majd alacsony fordulatszámú centrifugálással tovább t i s z t i t j u k. A szuszpenzió lárvatartalmát higitásos módszerrel, sztereomikroszkóp segitségével, szoros nagyitással állapítjuk meg. Ezek után a szuszpenziót ugy higitjuk, hogy 0,1 vagy 0,2 ml-ben legyen a fertőző dózisként használt lárva.
A fertőzés ideje alatt a lárvák egyenletes eloszlását férgek a gyermekek kezelésének áttekintése biztositjuk, hogy ne ülepedjenek le az edény aljára. Ezután következik a vizsgálandó vegyület megfelelő adagjának nyelőcsőszondán át való beadása.
A kezelés időpontját az szabja meg, hogy a vegyületnek a lárvák vagy a k i f e j l e t t férgek elleni hatékonyságát kivánjuk megvizsgálni.
A lárvák elleni hatásvizsgálat alkalmával a fertőzést követő napon - amikor a lárvák még nem jutottak el a tüdőbe - laboratóriumi egerek helmintjai kifejlett férgek elleni hatékonyság laboratóriumi egerek helmintjai pedig a fertőzés utáni 7. A fertőzött és kezelt patkányokat mindkét esetben a fertőzést követő 9.
A vékonybelet kiemeljük, hosszanti irányban felvágjuk, kb. A poharat egy órán keresztül 37 C-u vízfürdőben tartjuk. Ezalatt a férgek a béltartalomból a pohár aljára ülepednek. A féregszámot állategyedenként a következőképpen állapitjuk meg: 50 ml-es mérőhengerbe gondosan átmossuk az izolátumot, majd a hengert az es j e l i g feltöltjük élettani konyhasóoldattal, laboratóriumi egerek helmintjai felkeverés után 10 ml-t pipettával felszivunk és az ebben található férgek számát kis nagyítással megállapítjuk és öttel szorozzuk.
Közben arra is k i terjed a figyelmünk, hogy a férgek ivararányában mutatkozik e eltolódás.
Vegyületek antheimintikus hatásának felderítésére végzett hazai vizsgálatok féregmodelleken
A kezelt csoportokban öt-öt, a kontrollcsoportokban t i z - t i z patkányt használunk f e l. Ezen a modellen összehasonlításképpen egy kiváló anthelmintikuiriot, a tiabendazolt négyféle dózisban alkalmaztuk. Orális fertőzést követően a fertőzőképes lárvák eljutnak a vékonybél felső szakaszába i l l.
A fertőzést követő A peték a fertőzés utáni A petetermelés a napon éri el a maximumot, hétig magas marad, majd fokozatosan csökken. Laboratóriumi egerek helmintjai fertőzöttség az egerekben hónapig is fennmarad.
A lárvatenyésztéshez szükséges nagy mennyiségű pete nyeréséhez az egereket lárvával fertőzzük, igy a fertőzést követő Ettől kezdve gyűjtjük az egerek bélsarát.
Tartalomjegyzék
A bélsárkulturát azonos módon készitjük, mint a N. Az ott l e i r t eljárástól csupán annyiban térünk el, hogy 22 C-on t a r t juk a tenyészetet. Ezen a hőmérsékleten 6 nap alatt kifejlődnek a fertőzőképes lárvák.
A A lárvaszámolást közvetlenül a fertőzés előtt végezzük, higitásos módszerrel. Az egereket lárvával szondán át fertőzzük. Mivel ezen a modellen csak a k i f e j l e t t férgek elleni hatékonyság megállapítására végzünk szkrinelést, a vizsgálandó vegyülettel csak a fertőzést követő napon kezelünk.
A kezelést követő 4. Egy fonálféreg-ellenes hatásáról ismert kiváló anthelmintikum, 10 a tetramizol ezen a modellen a k i f e j l e t t férgek ellen a következő hatékonyságot mutatta,: 4. Fertőző anyagot első alkalommal természetes uton fertőződött e- gerekből nyertünk, majd kidolgoztuk a laboratóriumi egerek helmintjai alkalmazásának módszerét.
Az egerek fertőződése a galandféreg fertőzőképes petéinek szájon át való felvételével történik. A peteburokból a gazdaállat emésztőnedveinek hatására az 1. A fertőzés után nappal a cysticercoid visszatér a bél lumenébe, ahol ivarérettségig f e j lődik.
Házi egér – Wikipédia
Az ivarérett laboratóriumi egerek helmintjai a vékonybél hátsó negyedében tartózkodnak. A fertőződéstől számitott A fertőzöttség a napra spontán megszűnhet. A kisérleti egerek fertőzésére érett galandféregizekből nyert peték szuszpenzióját használjuk. A peték kiszabaditása céljából az érett izeket csiszolt végül üvegbottal finom selyemszitán szükség szerinti viz hozzáadásával átdörzsölj ük.
Laboratóriumi egerek helmintjai kapott szuszpenzió petetartalmát BÜRKER- vagy McMASTER-kamra segitségével állapitjuk meg, A fertőzésre olyen peteszuszpenziót használunk, amelynek 0,1 ml térfogata petét tartalmaz, A g-os, öthetes egerek fertőzését ugy végeztük 1, hogy a peteszuszpenziót szondán át az egerek nyelőcsövébe fecskendezzük. A kezeléseket a vizsgálandó vegyülettel a fertőzés utáni napon végezzük, és a kezelt, valamint a kezeletlen kontrollegereket az ezt követő 4.
